Leukocytantal i blod

Princip. Räkning av leukocyter under mikroskopi i ett visst antal kvadrater i räkningskammaren och beräkning av deras antal i 1 liter blod, med hänsyn tagen till utspädningen av blod och räkningskammarens volym.

Reagens: 3-5% lösning av ättiksyra, tonad för färgkärnor av leukocyter med några droppar metylenblå lösning. Lösningen har en blå färg, kan lagras under lång tid.

Förloppsförloppet. I ett torrt provrör häller man 0,4 ml ättiksyra. 0,02 ml blod samlas upp från ett finger (du kan använda antikoagulationsstabiliserat venöst blod). Torka pipettens spets, släng sedan blodet från det till botten av röret, blanda, vrid och blås blandningen av blod och reagens (pipettering). Märk röret och lämna det tills det räknas. Förvara en blandning av blod med en lösning av ättiksyra rekommenderas inte mer än 2-4 timmar.

Blodet utspätt i ett provrör med ättiksyra, blanda noggrant och fyll det med en räkningskammare. Den fyllda kammaren lämnas i ett horisontellt läge under 1 min för att lösa de vita blodkropparna. Utan att ändra kamerans horisontella position placerar de den på mikroskopets bord och vid låg förstoring (okular 10 ×, lins 8 ×) räknas de vita blodkropparna i 100 stora rutor, vilket motsvarar 1600 små.

För större noggrannhet räknas leukocyter över rutnätet i stora rutor, inte uppdelade i små rutor och ränder, från det övre vänstra hörnet av gallret. För bättre kontrast mörknar synfältet, släpper kondensorn och stänger bländaren. Cellerna placerade inuti torget och liggande på två linjer räknas för att inte räkna samma cell två gånger.

Beräkningen av antalet leukocyter utförs enligt formeln:

där X är antalet leukocyter i 1 pl blod; och - antalet leukocyter i 100 stora rutor; 20 - blodutspädning; 100 är antalet stora kvadrater; 250 är omvandlingsfaktorn per 1 μl, eftersom volymen på en stor kvadrat är 1/250 μl (torgets sida är 1/5 mm, höjden är 1/10 mm).

I praktiken, för att beräkna antalet leukocyter i 1 μl blod multipliceras deras antal i 100 stora rutor med 50 och i 1 liter multipliceras det resulterande värdet med 106.

Obs. Vid räkning av leukocyter är ett fel oundvikligt i 6-8% av fallen.

1. Med ett stort antal normocyter i perifert blod räknas de i antalet leukocyter (både leukocyter och normocyter - kärnbildade celler). För att korrekt fastställa antalet leukocyter bör det totala antalet kärnbildade blodceller subtrahera antalet normocyter.
2. De återstående felen liknar de som uppstår vid beräkningen av antalet röda blodkroppar i räkningskammaren.

Leukocytantal

Räknemetoden i kameran. Ta och spädning av blod som produceras genom rörmetoden. 0,4 ml av spädningsvätskan och 0,02 ml kapillärblod införes i röret (företrädesvis Vidalevskaya). Den resulterande utspädningen anses praktiskt taget vara 1:20. En 3-5% lösning av ättiksyra tonad med metylenblå används vanligen som ett spädningsmedel (ättiksyralysesytrocyter, metylenblå fläckar kärnorna i leukocyter). Före påfyllning av kammaren Goryaeva rör med utspädd blod skakas grundligt. Kammaren fylls på samma sätt som för räkningen av röda blodkroppar.

Leukocyter är mycket mindre än erytrocyter (1-2 per stor kvadrat), för noggrannhet görs räkningar i 100 stora kvadrater (ograderade). Beräkning: 100 stora kvadrater (1600 små) räknas en leukocyt.
Kom ihåg att volymen av en liten kvadrat är 1/4000 mm3 och blodet späds 20 gånger, antalet leukocyter i 1 μl blod beräknas: 4000 20 och dividerat med 1600 = a x 1/2. Praktiskt taget är det tillräckligt för att uppnå det faktiska innehållet av leukocyter i 1 | jl blod att dela upp i halva antalet erhållna i beräkningen och tillsätt 2 nollor. Det genomsnittliga metodfelet är ± 7%.

Mer exakt (2-3% fel) och perfekt är antalet leukocyter med hjälp av elektroniska enheter. Räkningen av leukocyter i partikelräknare utförs enligt samma princip som erytrocyter. Förblod utspättes och blandas med eventuella reagenslysande röda blodkroppar. I "Technicon" autoanalysator används en lösning av ättiksyra som sådan i "Culter" och "Celloskop" -enheterna - saponin eller sapoglobin, som tillsättes utspätt (1: 500, 1: 700) i isotonisk natriumkloridlösning (6 droppar per 20 ml utspädning).

Blod leukocyträkning utförs i färgade perifera blodutslag.
Det är bättre att räkna vid den tunnaste punkten nära smutsänden, minst 200 celler (med undantag för uttalad leukopeni) och sedan härleda procentandelen för vissa typer av vita blodkroppar. Räkning rekommenderas i samma ordning: hälften av cellerna ska räknas uppe, halv i botten av stroke utan att gå till kanten och mitt, zigzagging (3-4 synsfält längs stroke, 3-4 fält i rät vinkel mot mitten av stroke, sedan 3-4 fält till sidan parallellt med kanten, igen vinklar uppåt och så vidare till ena sidan).

Framställning av utstrykningar. Noggrant tvättat och avfettat glas (dess kant) berör en bloddroppe på injektionsstället. Smörj gör slipglas, lägg det i en vinkel på 45 ° till bilden framför droppen. Efter att ha tagit glaset till denna droppe, väntar de tills blodet sprider sig längs kanten, sedan med en snabb och enkel rörelse utför de slipglaset framåt och tar inte bort det från motivet innan det torkar ut hela droppen.

Ett riktigt smet har en gulaktig färg (tunn), når inte kanterna på glaset och slutar i ett spår (mustasch).

Färgprovningar som framställs efter preliminär fixering. Den bästa fixeringen uppnås i absolut metylenalkohol (3-5 minuter) eller i en blandning av Nikiforov med lika delar av absolut etanol och eter (30 minuter).

De huvudsakliga hematologiska färgerna innefattar metylenblå och dess derivat - azurblå I (metylen azurblå) och azurblå II (en blandning av lika delar azurblå I och metylenblå), till surt vattenlösligt gult eosin.

● Målning av Romanovsky-Giemsa. Romanovsky-Giemsa-färg (fabriksgjord) har följande sammansättning: Azur II - 3 g, vattenlöslig gul eosin - 0,8 g, metylalkohol - 250 ml och glycerin - 250 ml. Arbetsfärglösningen framställs med en hastighet av 1,5-2 droppar av den färdiga färgen per 1 ml destillerat vatten. Färgen hälls på ett smet med ett eventuellt högre skikt; färgtid - 30-35 minuter Efter denna period tvättas pannorna med vatten och torkas i luft. Med denna metod kan kärnan vara väl differentierad, men cytoplasmens neutrofila granularitet är mycket sämre, så den används ofta för att färglägga ett perifert blodsprut.

● Kombinerad maj-Grunwald-Romanovsky-Giemsa färgning enligt Pappenheim. Ett färdigt färgämne, en maj-Grunwald fixativ, som är en lösning av eosinmetylenblå i metylenalkohol, pipetteras på ett fast smear i 3 minuter. Efter 3 minuter tillsätts en lika stor mängd destillerat vatten till färgen som täcker lösningen och färgen fortsätter under ytterligare 1 minut. Därefter tvättas färgen och smeten torkas i luften. Därefter ommålas det torkade smetverket med en nyberedd vattenlösning av Romanovsky-färg under 8-15 minuter. Denna metod anses vara den bästa, speciellt för uttryckningar av murgpunkta.

En ökning av antalet leukocyter i det perifera blodet över den normala nivån kallas leukocytos, en minskning kallas leukopeni. Leukocytos (leukopeni) karakteriseras sällan av en proportionell ökning (minskning) i antalet leukocyter av alla slag, till exempel leukocytos med förtjockning av blodet. I de flesta fall finns det en ökning av antalet (minskning) av någon celltyp. Ökningen eller minskningen av antalet enskilda typer av leukocyter i blodet kan vara relativt eller absolut, beroende på det totala leukocyttalet - normalt, förhöjt eller minskat. Förändringen i antalet, förhållandet mellan enskilda former och morfologi av leukocyter beror på patogenens typ och virulens, arten, kursen och omfattningen av den patologiska processen, den individuella reaktionen hos organismen.

Metod att räkna leukocyter i Goryaev-kammaren

Vita blodceller - vita blodkroppar - spelar en viktig roll i kroppens antimikrobiella skydd. Granulocyter fagocytiserar mikrober och förstör dem med hjälp av enzymer som är inneslutna i granuler; lymfocyter producerar antikroppar och ger immunsvar mot kroppen.

Metoden för bestämning av provrörsmetoden: Häll i ett provrör 0,4 ml av en lösning av Türk (Türks vätska innehåller ättiksyra för att förstöra röda blodkroppar och metylenblått för färgning av kärnor av leukocyter). Använd en kapillärpipett för att dra 0,02 ml blod från en ny droppe, försiktigt blåsa den i ett provrör med ett reagens och skölj pipetten. Blanda väl. Samtidigt är blodutspädningen 20 gånger. En droppe utspätt blod samlas i slutet av en rund glasstång och appliceras på kanten av en polerad glaskammare.

Räkning utförs i 100 stora obrutna rutor, sammanställda av fyra. Används en liten ökning.

Avledningen av räkneformelnummer 1.

1. 100 rutor innehåller 1600 små rutor (16x100)

2. Blodvolymen över liten kvadrat 1/4000 mm3

3. Utspädning av blod 20 gånger

Antalet leukocyter i 1 μl blod = vid -4000-20. = Ax 50

Till exempel: 130 leukocyter räknades i 100 stora rutor av Goryaev-rutnätet. I 1 pl blod kommer antalet leukocyter vara 130 x 50 = 6500 eller 6,5-10 3.

För att bestämma innehållet av leukocyter i 1 liter blod måste antalet leukocyter, uttryckt i tusentals, multipliceras med 10 9.

I vårt exempel är antalet leukocyter i 1 liter blod 6,5-10 9.

194.48.155.245 © studopedia.ru är inte författare till de material som publiceras. Men ger möjlighet till fri användning. Finns det upphovsrättsintrång? Skriv till oss | Kontakta oss.

Inaktivera adBlock!
och uppdatera sidan (F5)
mycket nödvändigt

Leukocytantal i blod

Leukocytos kan vara absolut (sann) och relativ (omfördelande).

Absolut leukocytos observeras vid akuta inflammatoriska processer, vävnadsnekros, akuta bakterieinfektioner (med undantag av tyfus, brucellos, tularemi etc.), allergiska tillstånd, maligna tumörer (med vävnadsförstöring), slutna huvudskador och blödningar i hjärnan, diabetes. uremisk koma, chock, akut blodförlust, som primär reaktion - med strålningssjukdom. En signifikant ökning av antalet leukocyter uppträder med leukemi.

Relativ (omfördelande) är en följd av mottagandet av leukocyter i blodflödet från de organ som tjänar till hennes depå. Det uppstår efter att ha ätit (mat leukocytos), heta och kalla bad, starka känslor (vegetovaskulär leukocytos), intensivt muskulärt arbete (myogen leukocytos) etc.

Leukopeni. Leukopeni anses vara en indikator på inhibering av benmärgens funktionella förmåga som ett resultat av exponering för giftiga ämnen (arsenik, bensen etc.), vissa läkemedel (sulfanilamider, kloramfenikol, butadion, immuno, cyklofosfamid, etc.), virus (influensa, viral hepatit, mässling etc.), mikrober (tyfoid, brucellos, etc.), joniserande strålning, röntgen och hypersplenism (ökad mjältfunktion).

Leukocytos och leukopeni karakteriseras sällan av en proportionell ökning (minskning) i det totala antalet leukocyter av alla typer (till exempel leukocytos med förtjockning av blodet); i de flesta fall finns en ökning (minskning) i antalet av någon celltyp, därför används termerna "neutrofili", "neutropeni", "lymfocytos", "lymfopeni", "eosinofili", "eosinopeni", "monocytos", "monocytopeni", "Basophilia".

I den kliniska utvärderingen av förändringar i antalet leukocyter är stor vikt knuten till procentandelen för enskilda former av leukocyter, det vill säga leukocytformeln.

Leukocyt blodtal av en frisk person:

Relativ mängd Absolut mängd

Basofiler............................0-1% 0-0.0650 x 10 9 / l

Eosinofiler.........................0,5-5% 0,02-0,30 x 10 9/1

Neutrofiler: - myelocyter............ 0% frånvarande

- stuck... 1-6% 0,040-0,300 x 10 9/1

- segmenterade....47-72% 2,0-5,5 x 10 9 / l

Lymfocyter.................................. 19-37% 1,2-3,0 x 10 9 / L

Monocyter.............................. 3-11% 0,09-0,6 x 10 9 / L

Leukocyträkning utförs i färgade perifera blodutstrykningar. För korrekt tolkning av resultaten av studien av leukocytformeln rekommenderas att man räknar i absoluta kvantiteter men inte i relativa sådana. De vanligaste metoderna för att måla smuts av Romanovsky-Giemsa, Pappenheim. Under nedsänkning räknas åtminstone 200 celler, och sedan erhålles procentsatsförhållandet av vissa typer av leukocyter. Analys av leukogram med hänsyn till andra blodparametrar och den kliniska bilden är en värdefull metod för undersökning, det hjälper till vid diagnos och bestämning av prognosen för sjukdomen.

De främsta orsakerna till neutrofili.

Akut bakterieinfektioner - lokaliserad och generaliserad.

Inflammation eller nekros av vävnaden.

Medicinska effekter (kortikosteroider).

De främsta orsakerna till neutropeni.

Infektioner - bakteriell (tyfus, brucellos, tularemi, paratyphoid feber) och viral (infektiös hepatit, mässling, influensa, rubella och andra).

Myelotoxiska effekter och undertryckande av granulocytopoiesis (joniserande strålning, kemiska ämnen - bensen, anilin, DDT; medicinska effekter - cytostatika och immunosuppressiva medel, vitamin B₁₂-folsyrabristanemi, akut aleukemisk leukemi, aplastisk anemi).

Antikroppsexponering (immunförsvar) - Överkänslighet mot droger, autoimmuna sjukdomar (SLE, reumatoid artrit, kronisk lymfatisk leukemi), isoimmuna manifestationer (hemolytisk sjukdom hos nyfödda).

Omfördelning och deponering i organ - chockförhållanden, sjukdomar med splenomegali och hypersplenism.

Ärftliga former (familjen godartad kronisk neutropeni).

De främsta orsakerna till eosinofili.

Parasitiska invasioner (trichinos).

Kroniska hudskador - psoriasis, pemphigus, eksem.

Tumörer (eosinofila varianter av leukemi).

Andra sjukdomar - fibroplastisk endokardit Lefflera, skarlettfeber.

I återhämtningsfasen av infektioner och inflammatoriska sjukdomar (gynnsamt prognostiskt tecken).

Orsaker till eosinopeni (aneosinofili).

Ökad adrenokortikosteroidaktivitet i kroppen.

De främsta orsakerna till basofili:

Kronisk myeloid leukemi och erythremi.

De främsta orsakerna till monocytos.

Subakta och kroniska bakterieinfektioner.

Parasitiska infektioner - leishmaniasis, malaria.

Hemoblastos - monocytisk leukemi, lymfogranulomatos, lymfom.

Andra tillstånd är SLE, sarkoidos, reumatoid artrit, infektiös monocytos; under återhämtningsperioden från infektioner, när man lämnar agranulocytos efter splenektomi.

Minskningen av antalet monocyter är viktig främst vid bedömningen av lymfocyt-monocytförhållandet i lungtubberkulos.

De främsta orsakerna till lymfocytos.

Infektioner - akut virus (infektiös mononukleos, mässling, rubella, kycklingpox), kronisk bakteriell (tuberkulos, syfilis, brucellos), protozoal (toxoplasmos).

Hemoblastos (lymfocytisk leukemi, lymfom).

Andra sjukdomar - hypertyreos, Addisons sjukdom, vitamin B₁₂-folsyra anemi, hypo- och aplastisk anemi.

Lymfocytopeni observeras i SLE, Hodgkins sjukdom, utbredd tuberkulos av lymfkörtlarna, i det slutliga skedet av njursvikt, akut strålningssjukdom, immunbristtillstånd, som tar glukokortikoider.

Ökningen eller minskningen av antalet vissa typer av leukocyter i blodet kan vara relativt eller absolut. Om endast andelen av en viss typ av vit blodcell förändras, sker relativ neutrofili, relativ eosinopeni etc. Ökningen eller minskningen av det absoluta innehållet av någon typ av leukocyter, det vill säga antalet dessa celler per volym blodvolym, kallas absolut neutrofili, absolut eosinopeni etc.

Att ändra formeln till vänster (ökar antalet unga former av neutrofiler) är ett tecken på inflammation eller en nekrotisk process i kroppen.

Förskjutningen av leukocytformeln till höger är karakteristisk för strålningssjuka och vitamin B₁₂-folsyrabristanemi.

Frånvaron eller signifikant minskning av antalet typer av granulära leukocyter - granulocyter (neutrofiler, eosinofiler, basofiler) betecknas med termen agranulocytos. Beroende på förekomstmekanismen särskiljs myelotoxiska effekter (effekter av joniserande strålning, cytostatiskt intag) och immun (hapten och autoimmun agranulocytos).

Leukocyter (leukocyt)

Leukocyter. Kvantitativ bestämning av leukocyter. Att räkna leukocyter med hjälp av kameran Goryaeva. Kvantitativt innehåll av leukocyter. Leukocytos.

Vita blodkroppar

Antalet leukocyter i blodet beror både på deras bildningshastighet och på deras mobilisering från benmärgen, liksom på deras utnyttjande och migrering i vävnaderna (till lesionerna), infångas av lungorna och mjälten. Dessa processer påverkas i sin tur av ett antal fysiologiska faktorer, och därför är antalet leukocyter i en frisk persons blod föremål för fluktuationer: det stiger vid slutet av dagen, under fysisk ansträngning, känslomässig stress, intag av proteinmat och plötsliga förändringar i omgivande temperatur.

Kvantitativ bestämning av leukocyter

Leukocyter räknas med hjälp av Goryaev-kameran och använder automatiska räknare.

Att räkna leukocyter med hjälp av kameran Goryaeva

Med in vitro-metoden att ta blod för att räkna leukocyter:

• 0,4 ml av en lösning av 3-5% ättiksyra tonad med metylenblå hälles i röret. Använd en kapillärpipett för att dra 20 μl blod från en ny droppe (utspädning 20 gånger), försiktigt spräng den i ett provrör med ett reagens och skölj pipetten. Blanda väl
• ett rent och torrt lockglas gnids på kammaren så att regnbåge ringar bildas vid kontaktpunkten;
• Blod utspätt i ett provrör, blanda väl. Änden på en rund glasstång tar en bloddropp och tar den till kanten av kammarens polerade glas.
• Efter fyllning av kammaren lämnas den i 1 minut i vila för sedimentering av leukocyter;
• Leukocyter beaktas vid låg förstoring (objektiv × 8 eller × 9, okular × 10 eller × 15) med mörkret synvinkel (med nedsänkt kondensor eller smalat membran);
• för tillfredsställande resultat räknas leukocyter i 100 stora kvadrater.

Att veta volymen av en stor kvadrat och graden av utspädning av blod, hitta antalet leukocyter i 1 μl och 1 liter blod. Stora torgets sida är 1/5 mm, området är 1/25 mm2, volymen av utrymme ovanför denna kvadrat är 1/250 mm3.

Formel för att räkna vita blodkroppar:

där B är antalet leukocyter i 100 stora kvadrater;
P - utspädningsgraden (20).

Leukocytantal

Norm: 4,0-9,0 × 10 9 / L

Ökningen av antalet leukocyter över 9,0 × 10 9 / l kallas
leukocytos, en minskning av deras antal under 4,0 × 10 9 / l - leukopeni. Men även 3,5 × 10 9 i 1 liter leukocyter för ett antal individer kan vara normen. Enligt litteraturen har sådana personer ökat immunmotstånd och de är mindre benägna att bli sjuka, vilket tycks bero på behovet av ett immunsvar att ha en reserv av leukocyter i vävnader, där det finns 50-60 gånger mer än i blodet. Självklart, hos friska individer med lågt antal vita blodkroppar i perifert blod ökar deras reserver i vävnader motsvarande. Detta fenomen förklaras av ärftlig och familjär karaktär eller genom ökad påverkan av det parasympatiska nervsystemet.

Leukopeni kan vara funktionell och organisk.
Funktionell leukopeni är associerad med dysregulering av blodbildning och observeras:

• med vissa bakterie- och virusinfektioner (tyfusfeber, influensa, koppor, rubella, Botkins sjukdom, mässling);
• under verkan av droger (sulfonamider, analgetika, antikonvulsiva medel, antityroid, cytostatiska och andra droger);
• under muskelarbete, introduktion av främmande protein, nerv- och temperatureffekter, svält, hypotoniska tillstånd;
• falskt leukocytopeni kan associeras med leukocytaggregation vid långvarig förvaring av blod vid rumstemperatur (mer än 4 timmar).

Organisk leukopeni som härrör från benmärgs aplasi och dess ersättning med fettvävnad uppträder när:

• aplastisk anemi
• agranulocytos;
• leukopenisk leukemi;
• vissa former av Hodgkins sjukdom
• joniserande strålning;
• hypersplenism (primär och sekundär);
• kollagen sjukdomar.

leukocytos

Leukocytos är reaktionen hos det hematopoietiska systemet mot effekterna
exogena och endogena faktorer. Det finns fysiologisk och patologisk leukocytos.

Fysiologisk leukocytos är:

• matsmältning - efter att ha ätit, särskilt hög proteinhalt Antalet leukocyter överskrider inte 10,0-12,0 × 10 9 / l och efter 3-4 timmar återgår det till normalt;
• med känslomässig stress (adrenalin), svår fysisk ansträngning, kylning, överdriven solexponering (solbränna), administrering av ett antal hormoner (katekolaminer, glukokortikosteroider etc.) under andra halvan av graviditeten under menstruation och på grund av ojämn fördelning av leukocyter i blodet den vanliga.

Patologisk leukocytos är uppdelad i absoluta och relativa.

Absolut leukocytos - en ökning av antalet leukocyter i blodet upp till flera hundra tusen (100,0-600,0 × 10 9 / l och mer).

• Oftast observerad i leukemi: vid kronisk leukemi - i 98-100% av fallen vid akut leukemi - i 50-60%. Ändring av förhållandet mellan leukocytceller i benmärg och blodpunkta tjänar som grund för diagnosen leukemi.

Relativ leukocytos observeras:

• akuta inflammatoriska och infektiösa processer, med undantag av tyfusfeber, influensa, koppor, rubella, Botkins sjukdom, mässling. Den största leukocytosen (upp till 70,0-80,0 × 10 9 / l) observeras vid sepsis;
• under påverkan av giftiga ämnen (insektsgift, endotoxiner), joniserande strålning (omedelbart efter bestrålning);
• som ett resultat av verkan av kortikosteroider, adrenalin, histamin, acetylkolin och digitalispreparat;
• med vävnadsupplösning (nekros), myokardinfarkt, trombos av perifera artärer med utveckling av gangrän, brännskador, exudativ pleurisy, perikardit, uremi, hepatisk koma;
• signifikant blodförlust vid skador, inre, gynekologisk och annan blödning.

Ökningen av antalet leukocyter i infektionssjukdomar åtföljs i de flesta fall av en förändring av leukocytformeln till vänster

Leukocytantal och leukocytantal.

För att räkna leukocyter späds blod i blandare eller i provrör. Använd i detta syfte 3-5% lösning av ättiksyra (för destruktion av röda blodkroppar), tonad med något anilint färgämne (för färgning av leukocyter av kärnor). Räkningsnätet fylls på samma sätt som för räkningen av röda blodkroppar. Leukocyter räknas i 100 stora kvadrater. I Goryaev-nätet är det bekvämt att räkna dem i obrutna rutor (det finns 100 av dem på gallret). Med tanke på utspädningen av blod och volymen av vätska över kvadraterna, beräkna en konstant multiplikator. Vid avel 20 gånger är det 50.

När de arbetar med provrör, förhäller de 0,38 ml vätska i dem och släpper ut 0,02 ml blod i det. För att beräkna den automatiska räkningen i provrören, hemolyserar röda blodkroppar med saponin. Det normala antalet vita blodkroppar är 4,3 • 10 9 -11,3 • 10 9/1 eller 4300-11 300 i 1 μl blod.

Leukocyträkning räknat i färgade utstrykningar.

Ett gott smet uppfyller följande krav: det är tunt, och de formade elementen ligger i det i ett lager; i detta fall är smeten gul och genomskinlig. En bra smet är likformig, och cellerna är inte skadade genom smearing. För att blodet ska ligga jämt på glaset avfettas det genom att bränna en gasbrännare över flammen eller hållas i en blandning av alkohol och eter. Med glasets ände röra de den nyligen släppta lilla bloddroppen och sprida den utan dröjsmål på glaset. Före färgning fixeras smet genom nedsänkning i metanol i 3 minuter, i etanol eller dess blandning med eter i 30 minuter. Det finns ett antal andra fixare. Den torkade tappningen efter fixering fylls med färgämne.

Att skilja blodceller (definitioner av leukocytformeln) tillgriper differentiell färgning. Den mest använda färgen av Romanovsky-Giemsa. Denna färgämne är en blandning av svagt syra (eosin) och svagt alkaliska (azurblå II) färger. Celler och deras delar, beroende på mediets reaktion, uppfattar en eller annan komponent av färgämnet i dem: sura (basofila) substanser är färgade azurblå, alkaliska (oxifila) färgade eosinrödor; Neutral uppfattar båda färgerna och blir lila.

Leukocytformeln avser procentandelen av enskilda former av blodleukocyter.

OBS! För en tillräckligt exakt beräkning är det nödvändigt att se minst 200 vita blodkroppar.

Räkning görs med ett nedsänkningssystem. På grund av det faktum att cellerna är ojämnt placerade i smetet (de större går till kanterna) är det viktigt att hålla sig till en sådan rörelseordning på smeten, där dess kanter och mittområde skulle ses lika. En av de två metoderna för rörelse används: en av dem flyttar stroke från överkanten till botten, flyttar den 2 till 3 synfält längs kanten och går sedan i motsatt riktning till överkanten, etc. I den andra metoden rör de sig från kanten med 5 -6 fält i mitten av ett slag, sedan samma mängd sidledes, sedan tillbaka till kanten, förflytta åtskilliga fält sidledes och upprepa rörelsen igen tills 50 celler räknas. Se 4 av dessa platser på de fyra hörnen av smeten. Räknat 200 celler, numret är uppdelad i hälften och bestämmer antalet av varje typ av vita blodkroppar.

Leukocyter är element i blodet, snabbt reagera på olika yttre influenser och förändras inuti kroppen. Bestämningen av det totala antalet leukocyter kan vara av stor diagnostisk betydelse, eftersom det avslöjar tillståndet hos de blodbildande organen eller deras svar på skadliga effekter. Ökningen av antalet leukocyter - leukocytos - är resultatet av aktiveringen av leukopoiesis, en minskning av deras antal - leukopeni - kan bero på hämningen av de blodbildande organen, deras utarmning och den ökade nedbrytningen av leukocyter under verkan av anti-leukocytantikroppar 1. Neutrofiler. Den mest variabla gruppen av leukocyter är neutrofiler, vars antal ökar med många infektioner, förgiftningar och vävnadsuppdelning.

Karakteristisk för aktiv neutroposes är inte bara en ökning av det totala antalet neutrofiler i blodet utan även utseendet av omogna former i det: antalet stabila celler ökar, unga neutrofiler uppträder, ibland även myelocyter. Denna "föryngring" av den neutrofila kompositionen kallas leukocytskiftet till vänster. Neutrofilernas skyddande roll bestäms av deras fagocytiska funktion, bakteriedödande verkan och frisättning av proteolytiska enzymer som främjar resorptionen av nekrotisk vävnad och läkning av sår.

Oftast förekommer ett regenerativt skifte i närvaro av någon inflammatorisk process eller fokus på nekros. En mycket skarp vänsterskift till promyelocyter och till och med myeloblaster med signifikant leukocytos kallas leukemoidreaktionen. Minskningen av antalet neutrofiler - absolut neutropeni - uppträder när benmärgen hämmar exponeringen för toxiner från vissa mikroorganismer (orsak av tyfus, brucellos etc.) och virus, joniserande strålning, ett antal droger.

2. Lymfocyter. Lymfocytos observeras under återhämtningsperioden från akuta infektionssjukdomar, med infektiös mononukleos, infektiös lymfocytos, lymfocytisk leukemi, rubella, brucellos, tyrotoxikos.

Absolut lymfopeni uppträder i strålningssjukdom, systemiska lesioner i lymfsystemet: lymfom, lymfosarkom.

3. Eosinofiler. De finns i blodet i relativt små mängder (finns huvudsakligen i vävnaderna), men deras antal ökar, ibland signifikant, i allergiska processer (serumsjukdom, bronkialastma), helminthiska invasioner och pruritiska dermatoser.

En minskning av antalet eosinofiler - eosinopeni - fram till dess fullständiga försvinnande observeras vid sepsis, svåra former av tuberkulos, tyfoid och svår förgiftning.

4. Basofiler. Bärare av viktiga mediatorer av vävnadsmetabolism (blod "ekvivalenter" av fettvävnadsceller). När en organism är sensibiliserad ökar deras antal, och när allergenet återintroduceras minskar den kraftigt som ett resultat av deras nedbrytning.

5. Monocyter. Ökningen av antalet monocyter - monocytos - är en indikator på utvecklingen av immunförfaranden. Monocyter är igenkända som analoger av vävnadmakrofager. Monocyter finns i ett antal kroniska sjukdomar (kronosepsi, tuberkulos, syfilis). Monocytopeni observeras ibland i svåra septiska, hypertoxa former av tyfusfeber.

Agranulocyter. En särskiljande egenskap hos agranulocyter är den icke-segmenterade kärnan och den basofila (blå) cytoplasman.

Lymfocyt är den minsta leukocyten i storlek. Kärnan är rund, oval eller bönformad; upptar mest av cellen, intensivt färgad. Cytoplasmen hos de flesta lymfocyter med en smal rand omger kärnan, är färgad i en ljusblå färg och klargörs till kärnan.

Monocyt är den största av blodcellerna. Stor kärna av oregelbunden form och relativt ljus färg. Cytoplasman är en gråblå, rökig färg, inte klarad till kärnan

Förutom dessa celler är det sällsynt i normalt blod, och plasmaceller kan ofta förekomma i sjukdomar. De kännetecknas av en excentriskt placerad tät kärna, ofta av en hjulliknande struktur. Antalet av dessa celler ökar med vissa infektionssjukdomar, sår sepsis och multipelt myelom.

Vid beräkningen av leukocytformeln uppmärksammas inte bara kvantitativa skift i den utan även kvalitativa förändringar i formelementen. Tidigare noterades degenerativa förändringar i leukocyter. Vid allvarlig förgiftning blir neutrofila granulariteten riklig, stor, intensivt färgad och kallas giftig (eller toxogen). Ibland finns blodutslag i blodutslag, målade som kärnämne i leukocyter. Dessa är de så kallade Botkin-Humprecht-skuggorna - rester av nukleär kromatin, vilket indikerar ökad leukocytbritthet, vilket leder till deras nedbrytning - leukocytolys

99. Metoder för att bestämma blodgruppen, begreppet Rh-faktorn.

1. Bestämning av blodgruppen med standardsera:

Följande utrustning krävs:

o två uppsättningar av standardhemagglutinerande sera I (0), II (A), III (B) grupper av två olika serier och en injektionsflaska med serum IV (AB)

o flaska med isotonisk lösning av natriumklorid med pipett

o ren tvättad torrplatta

o glasskivor

o sterila spjutnålar för punktering av köttet på fingret

o sterila gasbindbollar,

Standard sera för bestämning av blodgrupp enligt ABO-systemet produceras med en specifik färgmärkning.: I (0) - färglös, II (A) - blå, III (B) - röd, IV (AB) - gul. Serum lagrad vid 4-10 ° C. Serum ska vara lätt och transparent. Förekomsten av flingor, sediment, grumlighet är tecken på serumets olämplighet. De första tecknen på agglutination ska uppträda senast 30 sekunder.

Plattan är uppdelad i 4 rutor med en färgpenna och i rätte riktningen betecknas rutorna I (0), II (A), III (B). En stor droppe serum i två serier I (0), II (A), W (B) grupper sätts i motsvarande kvadrat av plattan med en pipett. Fingerplattan behandlas med alkohol och en nål är punkterad i huden. Den första bloddroppen avlägsnas med en gasbind, de efterföljande dropparna i olika delar av glidbanan appliceras successivt till dropparna av serum och omröres noggrant. En droppe blod ska vara 5-10 gånger mindre än en droppe serum. Blanda sedan blodet med serum genom att skaka plattan. Preliminära resultat utvärderas efter 3 minuter, varefter en droppe isotonisk natriumkloridlösning tillsättes, blandas igen genom att skaka plattan och efter 5 minuter utförs en slutlig bedömning av agglutineringsreaktionen.

Med ett positivt isohemagglutinationstest avviker inte flingorna och kärnorna från de vidhäftande röda blodkropparna när man tillsätter en isotonisk lösning av natriumklorid och omröring.

När en negativ reaktion sänker serum på en tallrik genomskinlig, jämnt rosa, innehåller inte flingor och korn.

Följande 4 kombinationer av agglutineringsreaktioner med standardsera av grupperna I (O), II (A), III (B) är möjliga.

v Alla 3 sera i båda serierna agglutinerar inte. Blodprov -

Jag grupperar.

v Isohemagglutinationsreaktionen negativ med serum P (A) -grupper i båda serierna och positiva med serum I (O) och III (B). Blodprov -

II (A) -gruppen.

v Isohemagglutinationsreaktionen är negativ med serum från III (B) -gruppen i både serier och positiva med serum i I (0) och II (A) -grupperna. Blodprov -

III (B) -gruppen.

v Serum I (0), II (A), III (B) -grupperna ger en positiv reaktion i båda serierna. Blod tillhör IV (AB) -gruppen. Men innan man ger en sådan slutsats är det nödvändigt att utföra en isohemagglutineringsreaktion med standardserum IV (AB) i gruppen med användning av samma procedur. Ett negativt isohemagglutinationstest möjliggör slutligen att tilldela testblodet till IV (AB) -gruppen.

2. Begreppet Rh-faktor.

Ett annat antigen (agglutinogen) hittades i erytrocyterna, som kallades Rh-faktorn. Alla människor är uppdelade i individer med Rh-positivt (Rh +) och Rh-negativt (Rh) blod. Det har fastställts att 85% av befolkningen i erytrocyterna innehåller Rh-faktorn, dvs deras blod är Rh-positivt och 15% innehåller inte det, dvs blodet hos dessa människor är Rh-negativt. Till Rh-faktorn (Rh-antigen) finns normalt inga anti-Rh-agglutinin (färdiga antikroppar) i blodet. Sådana antikroppar uppträder endast i blodserum som ett resultat av immunisering av en person med Rh-negativt blod med Rh-positiva röda blodkroppar. Sådan immunisering sker på grund av upprepade transfusioner av Rh-positivt blod till en Rh-negativ mottagare eller under graviditet hos en kvinna med Rh-negativt Rh-positivt blod. Immuniserad på detta sätt blir människor sensibiliserade: när de transfusioneras med Rh-positivt blod utvecklas en allvarlig komplikation - en blodtransfusionschock.

Att räkna antalet leukocyter och blodplättar

Faktorer som påverkar riktigheten av studien av vita blodkroppar

- lång lagring av blod vid rumstemperatur

Norm av innehållet av leukocyter i blodet

Ålder Antal leukocyter

- 1 dag 11,6 - 22,0

- 1 vecka 8,1.- 14,3

- 1 månad 7,6 - 12,4

- Vuxna 4,0 - 9,0

Metoder för att bestämma antalet leukocyter i blodet.

- Att räkna antalet leukocyter i räkningskammaren

- Att räkna leukocyter i hematologiska analysatorer

Bestämning av antalet leukocyter i räkningskammaren.

- Räkning av leukocyter under ett mikroskop utförs efter lysning av röda blodkroppar i 100 stora kvadrater i räkningsnätet och omberäknat för 1 liter blod baserat på volymen kvadrater och utspädning av blod. Antalet leukocyter bör göras inom 2-4 timmar efter blodinsamlingen.

- Om det finns kärnbildade röda blodkroppar i det perifera blodet lyseras de inte och räknas tillsammans med leukocyter. I det här fallet, för att bestämma det verkliga antalet leukocyter subtraheras antalet celler i den röda raden från det totala antalet räknade celler.

- Till exempel: Det totala antalet leukocyter i beräkningen i kammaren (eller analysatorn) -45x109 / l. Vid beräkningen av leukocytformeln konstaterades att 50 erythroblaster (normoblaster) är närvarande per 100 leukocyter.

Vi beräknar det sanna antalet leukocyter i blodet:

150 celler - 45 x 109/1

100 celler (leukocyter) - X

X = 100 * 45 * 10/1/150 = 30 * 10/1

Således är det sanna antalet leukocyter i blodet 30 x 109/1.

De främsta källorna till fel vid beräkningen av leukocyter i kammaren:

- Felaktigt förhållande mellan blod och ättiksyravolymer i ett provrör.

- Felaktigt beredd lösning av ättiksyra (vid en koncentration på mer än 5% kan vissa leukocyter lysa, vilket leder till en underskattning av resultatet).

- Långvarig exponering av provet vid temperaturer över 28 ° C, vilket kan accelerera lyset av leukocyter i provet och leda till en underskattning av resultatet.

- Felaktig fyllning av Goryaev-kammaren. Precis som vid beräkning av röda blodkroppar måste kameran lämnas i 1 minut för att reglera cellerna.

- Goryaev-kameran tvättades inte tillräckligt bra efter den tidigare definitionen. Leukocyter kvar i kammaren kan överskatta resultaten av analysen.

Blodplätträkningsmetoder

- i räkningskammaren

Varje grupp av metoder har fördelar och nackdelar.

- Räkningen av blodplättar i kammaren är tillräckligt noggrann, kräver inte att beräkna antalet röda blodkroppar. Å andra sidan är denna metod mer arbetskrävande, eftersom blodplättarna i den inhemska formen representeras av små och dåligt kontrasterade element. Nackdelen med metoden är blodplätträkning i de kommande timmarna efter att ha tagit blod.

- Bestämning av antalet blodplättar i blodutsläpp är betydligt sämre i dess noggrannhet mot kammarmetoden eller automatiska räknare. Fel vid räkning i blodutsläpp kan bero på smärtors dåliga kvalitet och den därmed sammanhängande ojämn fördelningen av blodplättar, felaktig bestämning av antalet röda blodkroppar. En signifikant nackdel med metoden är nödvändigheten att samtidigt räkna blodplättar och röda blodkroppar i blodet. Fördelen med det är möjligheten att studera blodplättar när som helst, oavsett tidpunkten för bloduppsamlingen.

- Metoden för att bestämma blodplättar med hjälp av en hematologianalysator låter dig exakt bestämma antalet blodplättar, deras genomsnittliga volym och volymfördelning.

Unified metod för att räkna antalet blodleukocyter i räkningskammaren;

Metoder för att räkna antalet leukocyter i blodet

Unified 2 metoder för att bestämma antalet leukocyter i blodet:

- i räkningskammaren;

- med hjälp av hematologiska analysatorer.

Princip. Leukocyter räknas under ett mikroskop i en viss volym av räkningskammaren med konstant utspädning av blod efter förstöring av röda blodkroppar.

Reagens: 3-5% lösning av ättiksyra, tonad med en vattenhaltig lösning av metylenblått till fläckleukocytkärnor och underlättar deras räkning. Lösningen är blå i färg, stabil i förvaring.

Specialutrustning: mikroskop, räknarkammare Goryaeva.

Förloppsförloppet. Med hjälp av en mätpipett eller en automatisk dispenser hälls exakt 0,4 ml ättiksyralösning in i agglutinationsteströret och 0,02 ml (salikapillär) blod tillsätts till det. Tvätta kapillären flera gånger med en syralösning och blanda innehållet i röret. Detta resulterar i en utspädning av blod 20 gånger. Lämna till räkningen, men inte mer än 2-4 timmar efter blodprovtagning. Goryaev-kammaren är förberedd för arbete genom att torka ett lockglas så att regnbåge ringar uppträder. Återigen skaka innehållet i röret noggrant och fyll i Goryaev kammaren med denna blandning med en Pasteur pipette eller en glasstång med smält ände. Lämna den fyllda räkningskammaren i 1 minut i ett horisontellt läge för leukocyt sedimentering. Leukocyter räknas i 100 stora icke-graderade kvadrater i räkningskammaren under betingelserna: kondensorn sänks, okularet 10x eller 15x, linsen 8x. Räkningen börjar från det övre vänstra hörnet av Goryaev-kameranätet. När man räknar leukocyter styrs de av regeln: alla celler i torget och på avgränsningslinjerna räknas om de oftast går inuti torget. Celler som korsas av en delningslinje exakt i hälften räknas endast på två sidor av en fyrkant (till exempel vänster och övre).

Beräkning. Vid beräkning av antalet leukocyter i 1 μl blod användes formeln:

- antalet leukocyter i 1 ml blod;

a - antalet leukocyter beräknat i 100 stora kvadrater;

4000 volymomvandlingsfaktor till 1 pl, baserat på volymen av den lilla rutan, vilken är μl;

1600 - antalet räknade lilla rutor;

20 - blodutspädning.

För att omvandla antalet leukocyter i SI-enheter (i 1 liter blod) multipliceras den resulterande siffran med 10 6.

Praktiskt taget för att bestämma innehållet av leukocyter i 1 1 blod multipliceras antalet leukocyter, beräknat i 100 stora kvadrater i räknekammaren, med 50 dividerat med 1000 (det vill säga överfört till ett komma med 3 tecken till vänster) och multiplicerat med 10 9.

Metoder för att räkna leukocyter i Goryaev-kammaren, normer för indikatorer och avvikelser

Goryaev-kammaren är en anordning för mätning av antalet celler och partiklar i en viss volym vätska (blod, urin), bestående av ett speciellt tjockt föremål och täckglas.

En glasrutschbana har ett försänkt område i mitten, på vilket appliceras ett rutnät på 225 stora rutor. Av dessa rutor delas 25 jämnt in i 16 mindre rutor. På grund av denna nätvolym utförs beräkningen mer exakt än i andra handhållna räkneapparater.

Kamera service

Efter användning av instrumentet desinficeras gliden genom nedsänkning i en 4% formalinlösning i en timme eller i en 70% etanollösning i en halvtimme. Därefter tvättas kammaren noggrant med destillerat vatten. Överskottsvätskan avlägsnas med en mjuk trasa. Det är värt att uppmärksamma det faktum att kameran inte kan torkas med en bomullspinne på grund av att fibrerna klämmer fast vid den. Förvarat glas på ett torrt ställe.

Under användningen av kameran beräknas PE som ligger inuti rutnätet och på de övre och vänstra linjerna i dess omkrets. I det här fallet ingår inte partiklarna som berör rörets högra och nedre linjer under beräkningen av denna cell.

Bestämning av leukocyter i blodet

Metod för att räkna leukocyter

Beräkningen av antalet leukocyter börjar med utspädning av blod i en 3-5% lösning av etansyra med metylblå 20 gånger. Arbetsmaterial före användning torka torrt med gasbindning.

Skyddsglaset måste torkas före Newtons färgade ringar. Därefter fylls kammaren med utspätt blod medan de två första dropparna släpps ut på filterpapper. Vätskan går in i kammaren på grund av kapilläregenskapen hos vatten. Det är viktigt att se till att ingenting strömmar in i spåren vid fyllning. Om detta händer avlägsnas vätskan försiktigt med filterpapper. Lämna sedan gallret ensamt i en minut och vänta på FE att stoppa rörelsen.

Antalet vita blodkroppar utförs inom hundra stora kvadrater vid låg förstoring, det vill säga med ett okular 10x och ett mål 8x enligt Egorovs regel. Den resulterande siffran används i formeln.

X = (n × 250 × 20) / 100 eller X = n × 50

X - antalet leukocyter.

n är numret som erhållits genom att räkna i kammaren.

Antalet leukocyter bestäms med hänsyn till antalet stora kvadrater i gallret - 100 och utspädningen av blod - 20.

Hur är räkningen av leukocyter

Leukocytfrekvens och abnormiteter

Leukocytfrekvensen hos människor är 4,0 - 9,0 × 10 ^ / l. Eller annorlunda finns cirka 6000 vita blodkroppar i 1 kubikmeter blod.

Externa fysiologiska faktorer kan påverka avvikelser från normen:

• matintag före bloddonation;
• påkänning;
• graviditet eller menstruation hos kvinnor
• hypotermi eller överhettning;
• stor fysisk ansträngning före testning.

Om antalet vita blodkroppar överstiger 9,0 × 10 9 / l (leukocyter är förhöjda) kallas detta tillstånd leukocytos. En liknande bild kan ses med maligna blodsjukdomar, infektioner, strålskador och förgiftning.

Läkemedel kan också öka antalet leukocyter. Nekros av vävnader, kraftig blödning, inklusive som ett resultat av operation, njure koma, hjärtsjukdom - allt detta kan leda till leukocytos.

Nedgången i antalet leukocyter under 3,9 × 10 ^ / l kallas leukopeni. I vissa människor är dock ett fast antal leukocyter fixerat vid 3,5 × 10 ^ / l. Man tror att sådana personer upprätthåller en reserv av dessa celler i vävnaderna 50 gånger mer än i blodet. Det finns också funktionell leukopeni efter administrering av smärtstillande medel, sulfonamider och andra läkemedel, efter långvarigt muskelarbete, som ett resultat av infektion och virus (tyfoid, influensa och mässling).

Leukocytformel

Alla typer av leukocyter utgör leukocytformeln. På det kan du identifiera vissa patologier. Formlernas normer varierar med ålder och period av en persons liv. Skiftet är tydligt synligt hos kvinnor under graviditet eller efter förlossning.

Olika metoder används för att beräkna förhållandet mellan typerna av dessa celler, men de är alla relaterade till det faktum att de tyngre cellerna (t.ex. basofiler) ligger närmare smörjans kant och lymfocyterna, som ljusceller, förblir i mitten.

• Filipchenko metod. I denna metod utförs beräkningen längs den tvärgående raka linjen av gränsen från en ände till den andra. Strejken är mentalt uppdelad i tre delar.
• Schilling metod. Leukocyter räknas i fyra områden av ett smet.

De erhållna uppgifterna registreras i tabellen. Individuellt beräknas antalet av varje typ av vita blodkroppar med formlerna. Markerade de element som kom till synen. Poängen hålls till dess att summan av alla räknade celler är 100.

Metoder för att räkna leukocyter i urinen

I urinen beräknas antalet leukocyter i cellen Goryaeva Nechiporenko. Denna analys behövs för att övervaka njursjukdom. Periodisk undersökning av urin bidrar till att övervaka korrekt behandling och effektiviteten hos den föreskrivna behandlingen.

Urinsamling

I studien är det bara den första morgonen urinen mitt i urinering. Det är viktigt för patienten att följa de grundläggande reglerna för insamling av detta biomaterial. Särskild övningsutbildning för studien är inte nödvändig.

Beräkningsmetod

10 ml nyuppsamlad urin centrifugeras i tre minuter vid 2,5 tusen varv per minut. Före detta är det nödvändigt att säkerställa att urinen, för att undvika partiell sönderdelning av cellerna, har en svag syrereaktion.

Använd en pipett med ett smalt, ritat slut, ta bort det övre lagret. In vitro lämnar från 0,5 ml urin till 1 ml, beroende på volymen sediment.

Fällningen blandas försiktigt med supernatanten. Den resulterande lösningen används för att fylla goryaevräkningskammaren enligt en liknande princip som används vid beräkning av blodets PV. Kameran lämnas ensam i 3 till 5 minuter.

Vita blodkroppar måste räknas i stora rutor över hela gallret med en 7x okular och en 40x lins.

Den resulterande siffran används i formeln:

X = (a / 0,9) × (1000 / V)

X - Antal leukocyter i 1 ml urin.

a - den beräknade mängden dividerat med kammarens volym i 1 μl urinsediment.

v - Den mängd urin som tas för studien.

1000 - mängden sediment.

Detta är viktigt! Leukocytnorm: i 1 ml urin högst 2 × 10 3 vita blodkroppar.

Leukocytantal i blod

Laboratoriepersonal för att upptäcka blodtal av leukocyter använder oftast Goryaev-kammaren. Räkningen av leukocyter i Goryaev-kammaren är en mindre noggrann metod än bestämningen av leukocyter med hjälp av elektroniska anordningar. Storleken på felet är ± 7%.

Hur räknar man med räkningen?

1. In i röret häll 0,4 milliliter av utspädningsvätskan, såväl som 0,02 milliliter kapillärblod. Klar uppfödning anses vara 1:20.
2. Som en spädningsvätska används vanligen en 3 eller 5% lösning av ättiksyra. Den är förtonad med metylenblå, som genom reaktion färgar kärnorna i leukocyter.
3. Innan kammaren fylls, skakar Goryaev-röret så noggrant som möjligt. Fyllning av kameran är densamma som för räkning av röda blodkroppar.

Beräkningsegenskaper

Med antalet leukocyter som är signifikant sämre än röda blodkroppar är det av denna anledning att beräkningen görs i 100 stora kvadrater. I 100 kvadrater beräknades ett leukocytantal.

Med en volym av en liten kvadrat på 14 000 kubikmeter och en 20-faldig blodutspädning beräknas antalet leukocyter enligt följande: 4000x20, och sedan dividerat med 1600. Det visar sig 1/2 x a.

För att få ett antal vita blodkroppar i 1 μl ska den beräknade siffran delas med 2 och lägga till ytterligare två nollor.

Avvikelse av leukocyter från nivån indikerar leukocytos och leukopeni och kräver omedelbar noggrann undersökning, eftersom det finns stor sannolikhet för förekomst av tuberkulos, lunginflammation, sepsis, tyfusfeber, strålningssjukdom.